Russian Journal of AllergyRussian Journal of AllergyРоссийский Аллергологический Журнал1810-88302686-682XPublishing House ABV Press4610.36691/RJA46ArticlesСтатьиConference Report, Theses of ReportFagotsitarnaya aktivnost' monotsitov krovi v otvet na metitsillinrezistentnye shtammy staphylococcus aureus u bol'nykh polipoznym rinosinusitomФагоцитарная активность моноцитов крови в ответ на метициллинрезистентные штаммы staphylococcus aureus у больных полипозным риносинуситомKolenchukovaO AКоленчуковаО АLazarevaA MЛазареваА МSmirnovaS VСмирноваС ВSarmatovaN IСарматоваН ИDobretsovK GДобрецовК Г«Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАНИнститут биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета Минобрнауки РФНаучно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАНЦентр оториноларингологии ФГБУ Федеральный Сибирский научно - клинический центр ФМБА России15122018151SVOL 15, NOs1 (2018)ТОМ 15, №s1 (2018)474910032020Copyright ©; 2018, Pharmarus Print MediaCopyright ©; 2018, Фармарус Принт Медиа2018Pharmarus Print MediaФармарус Принт Медиаhttps://rusalljournal.ru/raj/article/view/46[Игнатова И.А., Коленчукова О.А., Смирнова С.В., Манчук В.Т., Капустина Т.А., Ким Т.И., Чижмотря Н.М. Микробиоценоз слизистой оболочки носа при аллергической риносинусопатии IIЖМЭИ, 2007, № 1, С. 62-64.][Kolenchukova, O.A., Smirnova, S.V., Lazareva, A.M. Features of microbiocenosis of nose mucous membrane during atopic and polypous rhinosinusitis II Zh. mikrobiol. (moscow), 2017, no. 1, p. 67-73.][Flack C.E., Zurek O.W., Meishery D.D., Pallister K.B., Malone C.L., Horswill A.R., Voyich J.M. Differential regulation of staphylococcal virulence by the sensor kinase SaeS in response to neutrophil - derived stimuli // Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, vol.111,no 13, pp. 19 - 25.][Shahkarami F., Rashki A., Rashki Ghalehnoo Z., Jundishapur J. Susceptibility and Plasmid Profiles of Methicillin - Resistant Staphylococcus aureus and Methicillin - Susceptible S. aureus // Microbiol. 2014, Vol. 7, no. 7, pp. 37 - 42.][Lauvau G., Chorro L., Spaulding E., Soudja S.M. Inflammatory monocyte effector mechanisms. Cell Immunol II 2014, Vol. 291, no. 1 - 2, pp. 32 - 40.][Shi C., Pamer E.G. Monocyte recruitment during infection and inflammationlINat. Rev. Immunol. 2011,Vol. 11, no. 11, pp. 762 - 774.][Maecker H., McCoy P., Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunologyproject // Nat. Rev. Immunol., 2012, Vol. 12, pp. 191 - 200.][Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endo - thelialprogenitor cells and monocyte subsets in human blood // J. Immunol. Methods, 2012, Vol. 381, no.][1 - 2, pp. 9 - 13.][Appleby L.J., Nausch N., Midzi N., Mduluza T., Allen J.E., Mutapi F. Sources of heterogeneity in human - monocyte subsets // Immunol. Lett., 2013, Vol. 152, no. 1, pp. 32 - 41.][Gordon S. Targeting a monocyte subset to reduce inflammation // Circ. Res., 2012, Vol. 110, no. 12, pp. 1546 - 1548.][Luider J.1., Cyfra M., Johnson P., Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5 - color flowcytometer on a regional flow cytometry clinical laboratory service // Lab. Hematol., 2004, Vol. 10, pp. 102 - 108.][Nocca G., De Sole P., Gambarini G., De Palma F., Parziale V., Giardina B., Lupi A. Alteration of monocyticcell oxidative burst caused by methacrylic monomers present in dental materials: a chemiluminescence study // Luminescence, 2006, Vol. 21, no. 3, pp. 202 - 206.]